Quellen: Björn Lohmann – “Die unsichtbare Schutztruppe”

1 Koppenhöfer, A. M. et al.: Entomopathogenic Nematodes in Sustainable Food Production, Frontiers in Sustainable Food Systems, 4 : 125, 2020.

https://doi.org/10.3389/fsufs.2020.00125

2 Parveen, A. et al.: Biocontrol efficacy of Pochonia chlamydosporia against root-knot nematode Meloidogyne javanica in eggplant and its impact on plant growth, Scientific Reports, 15 : 36990, 2025.

https://doi.org/10.1038/s41598-025-99527-2

3 Anderson, V. M. et al.: Microbial Control Agents for Fungus Gnats (Diptera: Sciaridae: Lycoriella) Affecting the Production of Oyster Mushrooms, Pleurotus spp., Insects, 12 (9) : 786, 2021. 

https://doi.org/10.3390/insects12090786

4 Memon, A. et al.: Efficacy of Entomopathogenic Fungi for Sustainable Biocontrol of Fungus Gnat (Bradysia difformis) in Peat-Free Substrates: A Laboratory Study, Sustainability, 17 (13) : 5897, 2025.

https://doi.org/10.3390/su17135897

5 Cloyd, R. A., Dickinson, A.: Effect of Bacillus thuringiensis subsp. israelensis and neonicotinoid insecticides on the fungus gnat Bradysia sp. nr. coprophila (Lintner) (Diptera: Sciaridae), Pest Management Science, 62 (2) : 171–177, 2006. 

https://doi.org/10.1002/ps.1143

6 Tavoosi Ajvad, F. et al.: Combined applications of an entomopathogenic fungus and a predatory mite to control fungus gnats (Diptera: Sciaridae) in mushroom production, Biological Control, 141 : 104101, 2020. 

https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2019.104101

7 Cloyd, R. A. et al.: Application rate and timing, potting medium, and host plant effects on the efficacy of Steinernema feltiae against the fungus gnat, Bradysia coprophila, in floriculture, Biological Control, 24 (1) : 28–39, 2002.

https://doi.org/10.1016/S1049-9644(03)00164-6

8 El-Hadad, M. E. et al.: Efficacy of Purpureocillium lilacinum AUMC 10149 as biocontrol agent against root-knot nematode Meloidogyne incognita infecting tomato plant, Nematoda, 46 : e253451, 2022.

https://doi.org/10.1590/1519-6984.253451

9 Kumar, A. et al.: Effectiveness of various nematode-trapping fungi for biocontrol of the Meloidogyne incognita in tomato (Lycopersicon esculentum Mill.), Rhizosphere, 28 : 100845, 2023.

https://doi.org/10.1016/j.rhisph.2023.100845

10 Möller, K. et al.: Vergleich verschiedener direkten Regulierungsmöglichkeiten der Trauermücken in der biologischen Topfkräuterproduktion, Forschungsbericht, FiBL Deutschland, 2016.

https://orgprints.org/id/file/58714

11 Möller, K. et al.: Regulierung von Trauermücken im ökologischen Anbau von Topfpflanzen – Innovative Verfahren zur Einschätzung der Attraktivität von Kultursubstraten für Trauermücken und umfassende Strategien zur Bekämpfung mittels Nützlingen, Abschlussbericht, FiBL Deutschland, 2018.

https://orgprints.org/56126/1/Abschlussbericht%20gesamt.pdf

12 Shapiro-Ilan, D. I. et al.: Effects of High Temperature Exposure on the Survival and Infectivity of Commercially Available Entomopathogenic Nematodes, Master Thesis/Technical Report, Cornell University, 2000er Jahre.

https://ecommons.cornell.edu/server/api/core/bitstreams/62d9d61f-fe67-4d02-b45e-d675e3bc3b6d/content

13 Hochschule Weihenstephan-Triesdorf: Minderung des Trauermückenbefalls durch neuartige anbau- und biotechnische Maßnahmen, Projektbeschreibung.

https://www.hswt.de/forschung/projekt/1142-minderung-trauermueckenbefall